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細胞培養實驗中用到的材料點擊次數:3087 更新時間:2011-02-10

                                    細胞培養實驗中用到的材料

1. 種類www.rose-nail.cn
1.1. 細胞培養實驗用品均為無菌,除了玻璃容器與pasteur pipet 外,其它均為塑料無菌制品。
1.2. TC 級培養盤表面均有coating 高分子物質以讓細胞吸附,培養容器種類有Tflask,plates, dishes, roller bottle 等,依實驗需要使用。
1.3. plastic sterile pipet: 1ml, 2ml,5ml, 10ml, 25ml
1.4. 塑料離心管: 15ml, 50ml,均有2 種不同材質,其中polypropylene (PP) 為不透明材質,polystyrene (PS) 為透明材質,可依實驗需要而選擇適合材質之離心管。
1.5. glass pastuer pipet: 9 inch,用以抽掉廢棄培養液等。
1.6. 玻璃血清瓶(Pyrex or Duran glassware):100ml, 250ml,500ml,1000ml
2. 清洗和滅菌
2.1. 新購玻璃血清瓶先以0.1~0.05 N HCl 浸泡數小時,洗凈后才開始使用。
2.2. 用過之玻璃血清瓶,以高壓蒸汽滅菌,洗凈后分別用一次與二次去離子水沖洗干凈,勿加清潔劑清洗。
2.3. 實驗用玻璃血清瓶以鋁箔紙包覆瓶蓋,高壓蒸汽滅菌121℃, 15 lb, 20 分鐘,置于oven 中烘干。
2.4. 實驗用玻璃pasteur pipet 以干熱滅菌170℃, 4 小時。 
2.5. 液體或是固體廢棄物可用10% hypochloride 溶液(次氯酸,即漂白水) 或是蒸汽高壓滅菌121℃, 15 lb, 20 分鐘處理。

3. 培養基
1. 液體培養基貯存于4℃冰箱,避免光照,實驗進行前放在37℃水槽中溫熱。
2. 液體培養基(加血清) 存放期為六個月,期間glutamine 可能會分解,若細胞生長不佳,可以再添加適量glutamine。
3. 粉末培養基配制(以1 升為例):
3.1. 細胞培養基通常須添加10% 血清,因此粉末培養基之配制體積為900ml,pH 為7.2 - 7.4。NaHCO3 為另外添加,若將NaHCO3 粉末直接加入液體培養基中會造成pH 之誤差,或局部過堿。因此粉末培養基及NaHCO3 粉末應分別溶解后才混合,然后用CO2 氣體調整pH,而非用強酸(HCl)或強堿(NaOH),因為氯離子對細胞生長可能有影響,且貯存時培養基的pH 易發生改變。
3.2. 材料:
3.2.1. 純水(milli-Q 水或二次至三次蒸餾水,水品質非常重要)
3.2.2. 粉末培養基
3.2.3. NaHCO3 (Sigma S-4019)
3.2.4. 電磁攪拌器
3.2.5. 無菌血清瓶
3.2.6. 0.1 或0.2 mm無菌過濾膜
3.2.7. pH meter
3.2.8. 真空幫浦
3.2.9. CO2 氣體
3.3. 步驟:
3.3.1. 取粉末培養基溶于700ml milli-Q 水中,攪拌使其溶解。
3.3.2. 稱取適量之NaHCO3 粉末(數量依培養基種類而異,表一)溶于200ml milli-Q 水中,攪拌使其溶解,然后通入CO2 氣體至飽和,約3-5 分鐘。
3.3.3. 將溶解且含飽和CO2 之NaHCO3 溶液加入溶解之液體培養基中混合。混后溶液之pH應為7.2-7.4,除非pH 值偏差太大,否則不需用酸堿再調整之。若為太堿,可再通入CO2 氣體調整pH。培養基以真空幫浦通過過濾膜時,pH 會升高0.1-0.2。
3.3.4. 以0.1 或0.2 mm 無菌過濾膜過濾滅菌,同時分裝至無菌容器中,標示培養基種類、日期、瓶號等,貯存于4℃。(血清亦可加入培養基中一起過濾)
3.3.5. 配制之培養基配制須作生長試驗與污染測試。
4. 配制培養基之生長測試
4.1. 材料:
4.1.1. MDCK cell (ATCC CCL-34 或CCRC 60004) 4.1.2. 6-well TC plate (or 35 mm TC dish)
4.1.3. methanol
4.1.4. glacial acetic acid
4.1.5. 10% Giemsa solution (GibcoBRL 10092-013)
4.2. 步驟:
4.2.1. 以待測試培養基培養MDCK cell,接種MDCK 細胞于6-well plate (或35mm TC dish) 中,每個well 接種1 × 102 活細胞,同時作對照組實驗。
4.2.2. 接種5~7 天后,在100 倍倒立顯微鏡作觀察細胞群落之生長,待細胞群落大到可以肉眼觀察,而群落間不互相接觸時即可。
4.2.3. 去除培養基,加入1ml Carnoy’s 固定液(甲醇:冰醋酸? 3:1),室溫下靜置10 min。
4.2.4. 去除固定液,水洗二次。
4.2.5. 加入1ml 10% Giemsa solution,,室溫下靜置染色2-3 min。
4.2.6. 去除染液,水洗二次。
4.2.7. 以肉眼計數群落數,并比較之,若新配制或新批號的培養基對細胞生長不佳,則丟棄之。

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